狂犬病毒检测方法GB/T 14926.56-2008第三方检测机构,GB/T 14926.56-2008标准检测
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安徽量科检测技术有限公司
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2026-08-21 08:32:35
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GB/T 标准规定了狂犬病病毒(RV)的检测方法,主要采用酶联免疫吸附试验(ELISA)进行血清学检测,以下是该标准检测方法的详细介绍:

一、检测原理

在微孔板上预包被纯化狂犬病毒抗原,使免疫反应在固相载体上进行。当被检血清中有狂犬病病毒抗体存在时,则与孔壁上的抗原形成抗原-抗体复合物,再与抗犬IgG酶标记物反应,最后通过测定酶作用底物催化后的产物,进行定性检测。

二、主要试剂和器材

试剂:

犬狂犬病毒IgG抗体检测试剂盒(定性),包括预包被狂犬病毒抗原的微孔板、狂犬病毒IgG酶标记物、狂犬病毒IgG阳性对照、狂犬病毒IgG临界对照、狂犬病毒IgG阴性对照、显色液A、显色液B、终止液、10倍浓缩洗涤液、样品稀释液等。

器材:

精密移液器(10μL~100μL)

一次性移液器吸头

振荡器

酶标仪(含450nm波长滤光片)

37℃恒温培养箱

吸水纸

三、检测步骤

样品准备:将采集到的待检犬血液样品离心,分离出待检犬血清或血浆。应避免使用染菌、溶血和高血脂的样品;室温保存样品不应超过8小时,若试验在8小时以后进行,需将样品保存在2℃~10℃,如保存超过一周,则应保存在-20℃并避免反复冻融。

试剂配置:将10倍浓缩洗涤液恢复至室温,并振摇,用去离子水或蒸馏水作10倍稀释。

稀释样品:将已分离好的犬血清或血浆用样品稀释液做1:10稀释,即取50μL血清或血浆加入到500μL样品稀释液中,并充分混匀。

加样:取所需量的预包被微孔板条固定于板架上,依次加入稀释好的样品,100μL/孔,将阳性、阴性对照各加1孔,临界对照加3孔,100μL/孔,另留一孔不加样品作为空白对照,在记录纸上记录各样品和对照的次序或位置,剩余的板条放入密封袋中保存。

孵育:加样完成后,用封板膜盖板条,置37℃恒温培养箱中孵育30分钟。

洗板:甩净孔中液体,拍干,用稀释好的洗涤液加满每孔,停留1分钟后甩净、拍干,如此重复洗涤3次。

加酶:除空白对照外,其余各孔垂直滴加酶标记物1滴(50μL),置37℃恒温培养箱孵育30分钟。

显色:重复步骤6洗板3次,拍干后每孔(含空白对照孔)垂直滴加显色液A、B液各1滴,置37℃恒温培养箱避光显色10分钟。

终止:每孔(含空白对照孔)立即加入终止液1滴,混匀后以空白孔调零,用酶标仪450nm波长测定A值。

四、结果判定

试验有效性判定:以空白孔调零,阴性对照值小于等于0.10,临界对照A值应在0.15~0.40之间,证明试验成立。

样品结果判定:

待检样品A值大于等于临界对照A值的平均值,判为阳性。

待检样品A值小于临界对照A值的平均值,判为阴性。

五、结果解释

基础级犬:接种疫苗后,经ELISA检测抗体效价达到阳性值判为合格。

SPF级犬:不应进行疫苗接种,对阳性检测结果,选用同一种方法或另一种方法重试。如为阳性则判为阳性。

基础级犬群体免疫抗体合格率:免疫抗体合格率=(被检动物抗体阳性数/被检动物总数)×基础级犬群体免疫抗体合格率达到70%以上可判为该犬群免疫合格。

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